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基于紫外吸收分光光度法進行蛋白質定量的方法與步驟

瀏覽次數:271 發布日期:2022-7-14  來源:蘇州阿爾法生物
使用紫外分光光度計進行蛋白質的定量的方法有許多,常用的是紫外線吸收法、BCA 方法、Bradford法、雙縮脲方法、 洛瑞 法、WST法等。蛋白質定量方法這5種方法對比如下:

表 1. 蛋白質定量方法的詳細信息
  原則 
濃度
范圍 
優點 缺點
紫外線吸收 280 nm 處的最大吸收對應于酪氨酸和色氨酸的響應,用于分析方法。 50 至 2000µg/mL (*BSA) 簡單的方法。樣品測量后即可使用。 每種蛋白質的吸光度不同。無法測量在280 nm 處沒有吸收的蛋白質,如膠原蛋白和明膠。在紫外區有吸收的核酸污染使測量變得模糊。
雙縮脲 多肽鏈與銅離子螯合后,蛋白質溶液變成紫色。將包含硫酸銅和羅謝爾鹽的雙縮脲試劑的堿性溶液添加到蛋白質溶液中。使用540 nm 處的最大吸收來確定數量。 150 至 9000 µg/mL (BSA) 簡單的程序。大多數蛋白質的顯色率是恒定的。 靈敏度低。無法測量蛋白質濃度低的樣品。顯色反應受高濃度三氨基甲烷、氨基酸和銨離子的影響。
洛瑞 在蛋白質溶液中加入堿性銅溶液。蛋白質的酪氨酸、色氨酸和半胱氨酸還原苯酚試劑的鉬酸和磷鎢酸,使溶液變藍。使用 750 nm 處的最大吸收來確定數量。 5 至 200 微克/微升 (BSA) 高靈敏度。廣泛使用。 程序復雜,準備時間長。由于顯色反應是通過還原反應發生的,因此還原材料的污染會干擾定量測定。每種蛋白質的顯色率不同。
BCA BCA 方法結合了雙縮脲法和二辛可寧酸 (BCA)。BCA 對銅離子具有高靈敏度和選擇性。當通過蛋白質的還原作用形成的銅離子與 2 個 BCA 分子反應時,溶液變為紫色。使用 560 nm 處的最大吸收來確定數量。 20 至 2000 微克/微升 (BSA) 簡單的程序。靈敏度高,濃度范圍廣。 硫醇、磷脂和硫酸銨會干擾測量。
布拉德福德 當蛋白質與三苯甲烷藍顏料之一的考馬斯亮藍 G250 結合時,蛋白質的最大吸收從 465 nm 轉移到 600 nm。使用 600 nm 處的最大吸收來確定數量。 10 至 2000 克/微升 (BSA) 非常簡單的操作。幾乎不受阻擋材料的影響。 每種蛋白質的顯色率不同。表面活性劑的污染會干擾顯色反應。
WST 用高 pH 值的蛋白質還原 WST-8,使樣品變藍。使用 650 nm 處的最大吸收來確定數量。 50 至 5000 µg/mL (BSA) 簡單的方法。幾乎不受表面活性劑的影響。 每種蛋白質的顯色率不同。
*BSA:牛血清白蛋白
 
一、紫外分光光度計(比色皿)紫外線吸收法的操作方法:
上圖顯示了人血清白蛋白 (HSA) 的吸收光譜。簡單的紫外吸收分光光度法可以通過使用 280 nm 處的最大吸收來確定樣品中蛋白質的數量。
1. 樣品準備
牛血清白蛋白 (BSA): 0.02, 0.025, 0.05, 0.1, 0.2, 0.25, 0.4, 0.5, 1, (1.5, 2) 毫克/毫升
雞蛋溶菌酶: 0.02, 0.025, 0.05, 0.1, 0.2, 0.25, (0.4, 0.5) 毫克/毫升
來自牛胰腺的糜蛋白酶: 0、0.1、0.2、 0.25 、0.4、0.5 毫克 / 毫升
括號內的值是用于 10 mm 矩形池的濃度。其他值是用于 10 mm 矩形池和微池的濃度。
2. 測量程序及結果
測量蛋白質溶液在 280 nm 處的吸光度。

 2. 紫外吸收法的結果
蛋白質  細胞 濃度范圍 校準曲線公式 相關函數 標準誤差 檢測限 測定極限
牛血清白蛋白 10 毫米矩形電池(石英) 至 2 毫克/毫升 Y = AX + B
A = 0.6652 ±0.0079
B = -0.0130 ±0.0064
0.9994 0.0219 0.0097 毫克/毫升 0.0470 毫克/毫升
微電池 至 1 毫克/毫升 Y = AX + B
A = 0.6713 ±0.0043
B = -0.0016 ±0.0008
0.9999 0.002 0.0012 毫克/毫升 0.0218 毫克/毫升
HEL 10 毫米矩形電池(石英) 至 0.5 毫克/毫升 Y = AX + B
A = 0.6474 ±0.0459
B = -0.0150 ±0.0109
0.9991 0.0076 0.0041 毫克/毫升 0.0680 毫克/毫升
微電池 至 0.25 毫克/毫升 Y = AX + B
A = 2.7499 ±0.0429
B = -0.0060 ±0.0055
0.9995 0.0031 0.0020 毫克/毫升 0.0096 毫克/毫升
α-胰凝乳蛋白酶 10 毫米矩形電池(石英) 至 0.5 毫克/毫升 Y = AX + B
A = 1.904 ±0.0237
B = -0.0035±0.0070
0.9997 0.0042 0.0037 毫克/毫升 0.0615 毫克/毫升
微電池 至 0.5 毫克/毫升 Y = AX + B
A = 2.1279 ±0.0655
B = -0.0202 ±0.0193
0.9983 0.0104 0.0091 毫克/毫升 0.1263 毫克/毫升
 
二.紫外分光光度計雙縮脲法蛋白質測定
1.添加雙縮脲試劑后,蛋白質溶液變為紫色,MAX吸收為 540 nm(圖 5)。
2.在 540 nm 吸收處測量顯色反應的時間過程。吸光度大約在 60 分鐘后變得穩定(圖 6)。圖 7 顯示了 60 分鐘后測量的 HSA 水溶液的光譜。雙縮脲法通過與樣品反應 60 分鐘后在 540 nm 處的最大吸收來確定數量。
3. 顯色試劑準備
雙縮脲試劑:在100 mL水溶液中加入60 mL 10% NaOH,溶解0.3 g CuSO4 和1.2 g羅謝爾鹽,然后加水定容至總體積200 mL。(標準試劑可存放在聚乙烯瓶中。)
4.樣品準備
牛血清白蛋白 (BSA): 0、0.25、0.5、 1 、5、9 mg/mL( 10 mm 矩形池(石英))
  0, 1, 3, 5, 9 mg/mL(微量池)
雞蛋溶菌酶: 0、1、3、 5 、9 mg/mL(10 mm 矩形池(石英)、微池)
來自牛胰腺的糜蛋白酶: 0、1、3、 5 、9 mg/mL(10 mm 矩形池(石英)、微池)
5. 測量程序及結果
將 Biuret 試劑 (2.0 mg) 添加到 500 μL 的蛋白質水溶液中并充分混合。然后使溶液反應 60 分鐘。在 540 nm 波長處測量吸光度。

 3. 雙縮脲法的結果
 蛋白質 細胞 濃度范圍 校準曲線公式 相關函數 標準誤差 檢測限 測定極限
牛血清白蛋白 10 毫米矩形電池(石英) 至 9 毫克/毫升 Y = AX 2 + BX + C
A = -0.0005 ± 4.3444 x 10-5
B = 0.0548 ± 0.0004
C = 0.0505 ± 0.0004
1 0.0109 0.008 毫克/毫升 0.1483 毫克/毫升
微電池 至 9 毫克/毫升 Y = AX 2 + BX + C
A = -0.0016 ± 0.0003
B = 0.0653 ± 0.0027
C = 0.0450 ± 0.0045
0.9998 0.0775 0.0696 毫克/毫升 1.0127 毫克/毫升
溶菌酶 10 毫米矩形電池(石英) 至 0.9 毫克/毫升 Y = AX 2 + BX + C
A = -0.0009 ± 4.9343 x 10 -5
B = 0.0591 ± 0.0005
C = 0.0509 ± 0.0008
1 0.0144 0.0133 毫克/毫升 0.2420 毫克/毫升
微電池 至 9 毫克/毫升 Y = AX 2 + BX + C
A = -0.0053 ± 0.0005
B = 0.0983 ± 0.0048
C = 0.0476 ± 0.0063
0.9999 0.0786 0.0640 毫克/毫升 --
α-胰凝乳蛋白酶 10 毫米矩形電池(石英) 至 9 毫克/毫升 Y = AX 2 + BX + C
A = -0.0012 ± 0.0004
B = 0.0064 ± 0.0035
C = 0.0578 ± 0.0060
0.9996 0.0958 0.0934 毫克/毫升 1.2987 毫克/毫升
微電池 至 9 毫克/毫升 Y = AX 2 + BX + C
A = -0.0010 ± 0.0003
B = 0.0614 ± 0.0025
C = 0.0343 ± 0.0043
0.9998 0.0697 0.0695 毫克/毫升 0.9987 毫克/毫升
 
三、 洛瑞法蛋白質測定
當堿性銅溶液和苯酚試劑添加到蛋白質溶液中時,蛋白質溶液變成藍色,最大吸收為 750 nm。在 750 nm 吸收處測量顯色反應的時間進程。吸光度在大約 10 分鐘后變得穩定。60 分鐘。
Lowry 方法通過在樣品反應 60 分鐘后使用 750 nm 的MAX 吸收來確定數量。
 
1.試劑準備:堿性銅溶液:將 50 mL 2% Na2CO3 溶液*3)與 1 mL 0.5% CuSO4 溶液 *4) 混合(只能用于即時分析)。
 
2.  2% Na 2 CO 3溶液:將無水碳酸鈉(2 g)和燒堿(0.4 g)溶于 100 mL水中
0.5% CuSO 4溶液:將硫酸銅(II)五水合物( 50 mg )和酒石酸鉀鈉四水合物( 0.1 g) 在 10 mL 水中。

2.樣品制備
相同的濃度用于 10 mm 矩形池和 10 mm 微池。
牛血清白蛋白 (BSA): 0、2、20、 50 、100、200 µg/mL
雞蛋溶菌酶: 0、1、5、 10 、20、50、100 、 200 µg/mL
來自牛胰腺的α-胰凝乳蛋白酶: 0、2、20、 50 、100、200 µg/mL

3.測量程序余結果
在 500 μL 的蛋白質溶液中加入 2.5 mg 堿性銅溶液。充分混合后讓其反應 10 分鐘。然后,加入苯酚試劑。快速混合并讓溶液反應 60 分鐘。測量 750 nm 處的吸光度。

表 4. Lowry 方法的結果
 蛋白質 細胞 濃度范圍 校準曲線公式 相關函數 標準誤差 檢測限 測定極限
牛血清白蛋白 10 毫米矩形電池(石英) 至 200 µg/mL Y = AX 2 + BX + C
A = -4.4663 x 10 -6 ± 5.5049 x 10 -7
B = 0.0041 ± 0.0001
B = 0.0041 ± 0.0001
0.9999 1.2336 0.8385 微克/毫升 3.9441 微克/毫升
微電池 至 200 µg/mL Y = AX 2 + BX + C
A = -4.0578 x 10 -6 ± 1.3689 x 10 -6
B = 0.0041 ± 0.0003
C = 0.0150 ± 0.0097
0.9994 2.5325 2.3903 微克/毫升 10.1765 微克/毫升
溶菌酶 10 毫米矩形電池(石英) 至 200 µg/mL Y = AX 2 + BX + C
A = -5.6033 x 10 -6 ± 7.2903 x 10 -7
B = 0.0049 ± 0.0001
C = 0.0293 ± 0.0037
0.9998 1.3861 0.7598 微克/毫升 3.5722 微克/毫升
微電池 至 200 µg/mL Y = AX 2 + BX + C
A = -4.8873 x 10 -6 ± 8.2675 x 10 -7
B = 0.0047 ± 0.0002
C = 0.00076 ± 0.0042
0.9997 1.6514 0.8911 微克/毫升 4.1471 微克/毫升
α-胰凝乳蛋白酶 10 毫米矩形電池(石英) 至 200 µg/mL Y = AX 2 + BX + C
A = -1.0948 x 10 -5 ± 4.3250 x 10 -7
0.0061 ± 8.8164 x 10 -5
C = 0.0112 ± 0.0027
1 0.685 0.4371 微克/毫升 7.6764 微克/毫升
微電池 至 200 µg/mL Y = AX 2 + BX + C
A = -8.8298 x 10 -6 ± 8.8527 x 10 -7
B = 0.0614 ± 0.0025
C = 0.0343 ± 0.0043
0.9999 1.3341 1.0214 毫克/毫升 16.3006 毫克/毫升
 
通過以上實驗結果參數對比,可以發現這幾種蛋白定量分析方法原理都是基于紫外吸收分光光度法的定量方法,所以可以使用簡單的紫外-可見分光光度計進行蛋白質定量分析或進行DNA 、RNA濃度測定的常用方法。蘇州阿爾法生物提供的電子天平、超純水機、紫外分光光度計 、均質機、冷凍離心機、超速離心機等實驗室設備,更多內容訪問蘇州阿爾法生物實驗器材網站。
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