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通過單核RNA測序和單細胞RNA測序信息互補更新皮膚轉錄組圖譜

瀏覽次數:992 發布日期:2023-8-2  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負
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研究背景
近年來,單細胞RNA測序(scRNA-seq)提高了我們對皮膚生物學的理解。但對新鮮樣本的需求、不完全解離導致的細胞損失或死亡,以及組織消化過程中的刺激作用都使scRNA-seq的實用性受到了限制。而單核RNA測序(snRNA-seq)可以應用于冷凍的、難以解離的樣本,這或許是可以繞過scRNA-seq對皮膚組織限制的一個途徑。

研究目的
分析比對snRNA-seq和scRNA-seq在檢測皮膚細胞時的效果差異。

研究方法
本研究對一個人的等分皮膚樣本進行了snRNA-seq和scRNA-seq并行檢測(單細胞測序技術服務由伯豪生物提供)并整合了先前發表的scRNA-seq數據,分析比較了兩種方法在細胞比例和基因表達方面的差異。另外,通過Slingshot方法分析了角質形成細胞和成纖維細胞的分化軌跡。

 
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研究結果
1. scRNA-seq檢測到數量更多的細胞和基因,尤其是免疫相關基因,而snRNA-seq受線粒體污染的影響較小,檢測到更多種類轉錄因子。

scRNA-seq中定位到外顯子區域的讀數的比例為56.4%,顯著高于snRNA-seq,其中讀數更多地定位到內含子區域;scRNA-seq中的counts或基因數量高于snRNA-seq,但是snRNA-seq中每個細胞的線粒體讀數的平均百分比低于scRNA-seq;對scRNA-seq和snRNA-seq中前100個高度可變基因的GO富集分析表明,snRNA-seq鑒定出更多與表皮發育相關的基因,而scRNA-seq則鑒定出更多的與免疫功能相關的基因;通過分析scRNA-seq和snRNA-seq檢測到的轉錄因子的差異,發現snRNA-seq可以檢測到更多的轉錄因子差異表達。

 

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2 . snRNA-seq和scRNA-seq在檢測細胞類型方面存在差異
由于scRNA-seq的不同消化方案可能導致細胞比例的變化,研究整合了已發表文章中健康皮膚的scRNA-seq數據進行比較分析。使用這些綜合數據,鑒定出了13個細胞類型簇。研究使用已知的特征基因確定了每個簇的同一性;snRNA-seq對角質形成細胞和成纖維細胞的檢測更有效,而scRNA-seq檢測出更多種類的免疫細胞;消化時間和不同類型的消化酶對scRNA-seq中的細胞活性和基因表達有不同的影響。在He等人的數據中,用混合酶消化整個皮膚,與本研究的scRNA-seq和Reynolds等人的數據相比,獲得了更多的角質形成細胞和角質形成細胞亞群。本研究和Reynolds等人在37°C下使用膠原酶IV過夜對真皮進行了消化,則獲得了大量的免疫細胞和FIB1。相反,He等人的消化時間很短,成纖維細胞亞群和免疫細胞的百分比更接近snRNA-seq.

 

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3. snRNA-seq揭示了更多與角質形成細胞功能相關的細胞簇
本研究基于snRNA-seq的結果,對角質形成細胞進行了二級無監督聚類,并通過特征基因和GO富集分析鑒定了8個亞聚類。皮膚形態發生相關的“基底”(高表達COL17A1、KRT15和KRT14)細胞;角質形成細胞分化和角質形成相關的“棘狀”(高表達KRT1和中等表達KRT10)和“顆粒狀”(高度表達LOR、FLG和SPINK5);參與細胞連接組裝的 “通道間隙”(表達GJB2和GJB6)細胞;ATP代謝,調節細胞連接的離子通道相關的“通道ATP酶”(表達ATP1A1和P1B1)細胞;角質形成細胞分化和細胞連接的過程相關“毛囊(外根鞘)”(表達KRT6A、KRT6B和KRT17)細胞;脂肪酸代謝以分泌皮脂相關的“毛囊(內鞘(IR)-皮脂腺)”(表達KRT79、ELOVL5和FASN)細胞;有絲分裂核分裂相關的“有絲分裂”(表達UBE2C、TOP2A和MKI67)。這些亞群很好地概括了角質形成細胞的空間和功能聚類;利用snRNA-seq中角質形成細胞亞群的分群方法對scRNA-seq數據進行處理,發現兩種方法中,角質形成細胞子群的比例不平衡。在scRNA-seq數據集中,功能性角質形成細胞的比例顯著降低,包括“通道ATP酶”、“通道間隙”、“棘狀”和“有絲分裂”細胞。

 

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4. snRNA-seq鑒定出調控角質形成細胞分化的基因
由于角質形成細胞的分化狀態與亞群密切相關,本研究通過偽時間分析探究了角質形成細胞分化過程。“基底”細胞被定義為起點,五個譜系被識別為代表不同的軌跡。沿著這些軌跡,本研究發現了代表角質形成細胞分化特定階段的新標志物。例如,LYPD3和EMP2的表達隨著角質形成細胞的角質化而增加;CSTB主要在毛囊外根鞘周圍的角質形成細胞中表達;結合人類蛋白質圖譜(HPA)數據庫,證實了這些基因在原位皮膚中的蛋白質表達與轉錄組分析一致;“基底”和“毛囊(外根鞘)”細胞高表達NFIB,用于維持干細胞特性并調節細胞周期;GRHL1在分化軌跡末端表達逐漸增多,表明其參與角質形成細胞的功能分化。在HPA數據庫中,NFIB主要在正常皮膚和基底細胞癌(BCC)的“基底”角質形成細胞中表達。GRHL1在正常皮膚的基底上角質形成細胞中表達,但在cSCC中不表達。

 

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5. snRNA-seq揭示穩態下的人類成纖維細胞圖譜
由于成纖維細胞在解離過程中會發生顯著變化,本研究在集成數據集上進行了二級無監督聚類,進一步的確定了其異質性;與scRNA-seq相比,snRNA-seq中的亞簇數量顯著較低;根據位置和功能(分泌性乳頭狀細胞、分泌性網狀細胞、間充質細胞和促炎細胞),并結合最近提出的四個亞群的特征基因,進一步定義了成纖維細胞的亞群;促炎性成纖維細胞的基因表達特征主要局限于C1-C5中的成纖維細胞,且僅在scRNA-seq數據中發現,表明酶消化可能激活成纖維細胞并誘導炎癥表型。C1和C3具有乳頭狀成纖維細胞的特征;C2主要表現為網狀成纖維細胞的特征;C4和C8主要表現出間充質特征。C0、C6和C9主要存在于snRNA-seq數據中。這三個亞群共享Pi16+成纖維細胞祖細胞。C7高表達PI16和DPT,這是泛成纖維細胞祖細胞的兩個標志物,并被選為成纖維細胞軌跡分析的起點。Slingshot譜系推斷確定了從PI16+簇中出現并在兩個方向上結束的五個軌跡:穩定簇或激活簇,表示皮膚成纖維細胞在穩定或激活狀態下的分化軌跡。狀態特異性特化成纖維細胞與分級聚類分析完全一致,表明scRNA-seq中的單細胞分離可能導致成纖維細胞的炎癥激活,而snRNA-seq反映了成纖維細胞在原位的穩定狀態。


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6. scRNA-seq和snRNA-seq在識別皮膚中的免疫細胞方面是互補的:scRNA-seq具有更大的檢測免疫細胞的能力;而snRNA-seq在檢測某些稀有細胞方面更為優越
本研究分析了包括DC、巨噬細胞和T細胞在內的主要免疫細胞基因表達的變化。scRNA-seq和snRNA-seq都揭示了DC和巨噬細胞中常見的抗原呈遞細胞(APC)功能,包括細胞因子產生、白細胞趨化性和T細胞活化的陽性調節。然而,scRNA-seq展現出更多的免疫相關功能,如“對脂多糖的反應”,并且該GO術語中的大多數基因編碼有效或功能性分子。scRNA-seq還鑒定出比snRNA-seq數量高得多的CCR7+CD40+遷移APC,但幾乎沒有檢測到任何LC;而snRNA-seq可以鑒定少量的LC;研究還發現,scRNA-seq和snRNA-seq都檢測出大量與T細胞功能相關的生物學過程。其中,scRNA-seq鑒定了罕見的駐留T細胞。編碼分泌細胞因子、表面標記物和轉錄因子(RORA除外)的T細胞亞群相關基因的豐度在scRNA-seq數據集中遠高于snRNA-seq。

 

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研究總結
在對皮膚組織的研究中,snRNA-seq不太容易受到線粒體和核糖體RNA的污染,并能檢測到更多種類的轉錄因子;通過這些有別與scRNA-seq的結果,可以對細胞亞群的功能性進行更深入的研究。相較于scRNA-seq的組織解離帶來的刺激,snRNA-seq可以檢測出穩態環境下的轉錄組特征。在檢測免疫細胞方面,scRNA-seq具有更大的檢測免疫細胞的能力;而snRNA-seq在檢測某些稀有細胞方面更為優越。

原文鏈接:
https://www.jdsjournal.com/article/S0923-1811(23)00145-7/fulltext

關于snRNA-seq研究方法
相較于已經廣泛應用的scRNA-seq,snRNA-seq的相關研究還相對較少。但正如本研究的結果所述,snRNA-seq對冷凍的、難以解離的樣本上有著很大的優勢,同時也能避免scRNA-seq中組織消化過程中的刺激作用。而在snRNA-seq的實驗過程中,獲取足夠數量的高純度細胞核,是建庫,及影響后續測序分析的關鍵步驟。低質量的細胞核會顯著降低文庫的質量,甚至可能直接導致建庫的失敗。

本研究所使用的伯優®細胞核分離試劑盒是由伯豪生物獨立研究開發的產品。

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產品優勢
最大限度地維持細胞核膜的完整和染色質的空間結構穩定性得率高,雜質少,不易成團。

產品應用
表觀遺傳學研究(如scATAC- seq/bulk ATAC- seq,CUT&Tag);
核轉錄組測序(snRNA-seq/bulk RNA-seq)等;

結果參考 

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發布者:上海伯豪生物技術有限公司
聯系電話:021-58955370
E-mail:market@shbio.com

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