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貼壁/懸浮細(xì)胞及組織切片進(jìn)行Hoechst染色的方法步驟

瀏覽次數(shù):9129 發(fā)布日期:2016-9-8  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)

Hoechst染色方法

1.貼壁細(xì)胞
1)   取普通潔凈蓋玻片于70%乙醇中浸泡5分鐘或更長時間,無菌超凈臺內(nèi)吹干或用細(xì)胞培養(yǎng)PBS或0.9%NaCl等溶液洗滌三遍,再用細(xì)胞培養(yǎng)液洗滌一遍。將蓋玻片置于六孔板內(nèi),種入細(xì)胞培養(yǎng)過夜,使約為50%-80%滿。
2)   刺激細(xì)胞發(fā)生凋亡后,吸盡培養(yǎng)液,加入0.5ml固定液,固定10分鐘或更長時間(可4℃過夜)。
3)   去固定液,用PBS或0.9%NaCl洗兩遍,每次3分鐘,吸盡液體。洗滌時宜用搖床,或手動晃動數(shù)次。
4)   加入0.5ml Hoechst 33258染色液,染色5分鐘。也宜用搖床,或手動晃動數(shù)次。
5)   用PBS或0.9%NaCl洗兩遍,每次3分鐘。
6)   滴一滴抗熒光淬滅封片液于載玻片上,蓋上貼有細(xì)胞的蓋玻片,盡量避免氣泡。使細(xì)胞接觸封片液,切勿弄反。
7)   熒光顯微鏡可檢測到呈藍(lán)色的細(xì)胞核。
 
2. 懸浮細(xì)胞
1)   離心收集細(xì)胞樣品于1.5ml離心管內(nèi),加入0.5ml固定液,緩緩懸起細(xì)胞,固定10分鐘或更長時間(可4℃過夜)。
2)   離心去固定液,用PBS或0.9%NaCl洗兩遍,每次3分鐘。洗滌期間手動晃動。
3)   最后一次離心后吸去大部分液體保留約50ml液體,再緩緩懸起細(xì)胞,滴加至載玻片上,盡量使細(xì)胞分布均勻。
4)   稍晾干,使細(xì)胞貼在載玻片上不易隨液體流動。
5)   均勻滴上0.5ml Hoechst 33258染色液,染色5分鐘。用吸水紙從邊緣吸去液體,微晾干。
6)   用PBS或0.9%NaCl洗兩遍,每次3分鐘。
7)   滴一滴抗熒光淬滅封片液于載玻片上,蓋上一潔凈的蓋玻片,盡量避免氣泡。
8)   H. 熒光顯微鏡可檢測到呈藍(lán)色的細(xì)胞核。
 
3. 組織切片
1)   常規(guī)包埋切片后,脫蠟,透明。
2)   PBS或0.9%NaCl洗兩遍,每次3分鐘,吸盡液體。洗滌時宜用搖床,或手動晃動數(shù)次。可在六孔板中操作。
3)   加入0.5ml Hoechst 33258染色液,染色5分鐘。也宜用搖床,或手動晃動。
4)   用PBS或0.9%NaCl洗兩遍,每次3分鐘。
5)   將切片置于載玻片上,滴一滴抗淬滅封片液,蓋上一潔凈的蓋玻片,盡量避免氣泡。
6)   熒光顯微鏡可檢測到呈藍(lán)色的細(xì)胞核。

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