基本原理
　　經(jīng)固定的凋亡細(xì)胞其染色體熒光染料的DNA可染性性下降。細(xì)胞一經(jīng)固定就不再是活細(xì)胞，而且細(xì)胞固定過程對細(xì)胞膜的通透性也有影響。因此發(fā)展了用“細(xì)胞活性”鑒定染料染色的流式細(xì)胞儀檢測方法。這些方法細(xì)胞不經(jīng)固定就直接用DNA染料染色，且染料的濃度要比固定細(xì)胞所用的濃度要低得多。流式細(xì)胞儀通常根據(jù)細(xì)胞膜完整性將細(xì)胞分為“活細(xì)胞”和“死細(xì)胞”，因此正常細(xì)胞和凋亡細(xì)胞歸為活細(xì)胞。活細(xì)胞染料如Hoechst 33342能少許進(jìn)入正常細(xì)胞膜而對細(xì)胞沒有太大得細(xì)胞毒作用。Hoechst 33342在凋亡細(xì)胞中的熒光強(qiáng)度要比正常細(xì)胞中要高，Hoechst 33342在凋亡細(xì)胞中的熒光強(qiáng)度增高的機(jī)制與凋亡細(xì)胞膜通透性發(fā)生改變有關(guān)，凋亡細(xì)胞早期細(xì)胞膜的完整性沒有明顯性改變，但細(xì)胞膜的通透性已有增強(qiáng)，因此進(jìn)入凋亡細(xì)胞中的Hoechst 33342比正常細(xì)胞的多。此外，還與凋亡細(xì)胞的染色體DNA的結(jié)構(gòu)發(fā)生了改變從而使該染料能更有效地與DNA結(jié)合以及凋亡細(xì)胞膜上的p-糖蛋白泵功能受到損傷不能有效地將Hoechst 33342排出到細(xì)胞外使之在細(xì)胞內(nèi)積累增加等有關(guān)。既然Hoechst 33342進(jìn)入凋亡細(xì)胞中比正常細(xì)胞更容易，而EB、PI或7-AAD等染料是不能進(jìn)入細(xì)胞膜完整的活細(xì)胞中，即正常細(xì)胞和凋亡細(xì)胞在不經(jīng)固定的情況下對這些染料是拒染，壞死細(xì)胞由于膜完整性在早期即已破損，可被這些染料染色。根據(jù)這些特性，用Hoechst 33342結(jié)合PI或EB等染料對凋亡細(xì)胞進(jìn)行雙染色，就可在流式細(xì)胞儀上將正常細(xì)胞、凋亡細(xì)胞和壞死細(xì)胞區(qū)別開來。在雙變量流式細(xì)胞儀的散點(diǎn)圖上，這三群細(xì)胞表現(xiàn)分別為：正常細(xì)胞為低藍(lán)色/低紅色（Hoechst 33342+/PI+），凋亡細(xì)胞為高藍(lán)色/低紅色（Hoechst 33342++/PI+），壞死細(xì)胞為低藍(lán)色/高紅色（Hoechst 33342+/PI++）。


試劑與儀器
 Heochst 33342 染液：用PBS配成10ug/ml的儲(chǔ)存液濃度，4℃避光保存；
 PI染液 ：用PBS配成5ug/ml濃度，4℃避光保存。
 400目的篩網(wǎng)
 流式細(xì)胞儀

實(shí)驗(yàn)步驟
1. 懸浮生長的細(xì)胞在培養(yǎng)的狀態(tài)下加入Heochst 33342 ，終濃度為1ug/ml； 37℃孵育7—10min。
2. 低溫500 ~ 1000r/min離心5min棄去染液。
3. 加入1.0ml PI染液，4℃避光染色15min。
4. 400目的篩網(wǎng)過濾1次。
5. 流式細(xì)胞儀分析：Heochst 33342用氪激光激發(fā)的紫外線熒光，激發(fā)光波波長為352nm，發(fā)射光波波長為400 ~ 500nm，產(chǎn)生蘭色熒光；PI用氬離子激光激發(fā)熒光，激發(fā)光波波長為488nm，發(fā)射光波波長大于630nm，產(chǎn)生紅色熒光。分析蘭色熒光對紅色熒光的散點(diǎn)圖或地形圖。
6. 結(jié)果判斷：在蘭色熒光對紅色熒光的散點(diǎn)圖上，結(jié)果為：正常細(xì)胞為低藍(lán)光/低紅光，凋亡細(xì)胞為高藍(lán)光/低紅光，壞死細(xì)胞為低藍(lán)光/高紅光。

注意事項(xiàng)
1. 在紅色熒光對蘭色熒光散點(diǎn)圖上，還可見到細(xì)胞凋亡區(qū)向細(xì)胞壞死區(qū)遷移的軌跡，可能是凋亡細(xì)胞的DNA進(jìn)一步降解的緣故。
2. 用Heochst 33342染料與細(xì)胞孵育的時(shí)間不宜過長，一般控制在20min之內(nèi)為宜。如果太長可引起Heochst 33342的發(fā)射光譜由藍(lán)光向紅光的遷移，導(dǎo)致紅色熒光與蘭色熒光的比例改變，從而影響結(jié)果的判斷。