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細胞凍存基本流程tips

瀏覽次數:1059 發(fā)布日期:2022-12-28  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負

細胞在正常的生長活動中會不斷的代謝,需要有各類蛋白酶的參與,當低于-70℃時蛋白酶就會停止工作。所以在超低溫的環(huán)境下,可以使細胞停止代謝活動,進入休眠狀態(tài),以便于長期儲存。


實驗材料

基礎材料:

● 基礎培養(yǎng)基

● 血清(常規(guī)為FBS/NBS)

● 超凈工作臺

● 無菌二甲基亞砜(DMSO)

● 無菌PBS磷酸鹽緩沖液

● 移液槍

● 電動移液槍

 

耐思相關耗材:

●  PET/PETG方形試劑瓶[NEST]

●  15mL、50mL無菌離心管[NEST]                        

●  盒裝無菌吸頭[NEST]             

●  血清移液管[NEST]                                                         

●  杯式濾器(0.22μm PES膜) [NEST]                

●  針式濾器 (0.22μm PES膜) [NEST]                                  

●  凍存管[NEST]              

●  自動旋蓋機[NEST]

●  程序降溫盒[NEST]

實驗準備

●   凍存液準備:

一般的細胞:55%基礎培養(yǎng)基+40%牛血清(FBS/NBS)+5%DMSO

重要的細胞:90%牛血清(FBS/NBS)+10%DMSO

凍存液配置完成后,15ml離心管[NEST]分裝,4℃條件下儲存?zhèn)溆谩H襞渲昧枯^大,可分裝入50ml離心管[NEST],-20℃條件下冷凍儲存。(若牛血清內存在析出沉淀物,采用0.22μm 濾膜過濾除菌)

使用前37℃水浴加熱。

 

●   待凍存細胞準備:

使細胞凍存前,選擇細胞生長狀態(tài)良好,且處于對數生長期的細胞,凍存前12~24h換新鮮培養(yǎng)基維持細胞狀態(tài)。
 

實驗流程

1、觀察待凍存細胞密度,約為80%~90%。用移液槍吸出陳舊培養(yǎng)基,加入無菌PBS清洗細胞1-2次,去除培養(yǎng)環(huán)境中的殘留培養(yǎng)基。

2、加入適量對應胰酶或消化液,使胰酶沒過細胞,放入培養(yǎng)箱消化。顯微鏡下觀察細胞狀態(tài),胞質回縮,細胞間不再連接成片,此時加入完終止液終止消化。

3、用吸頭輕輕吹打細胞,形成細胞懸液,將細胞懸液1000rpm,離心3-5min。丟棄上清,加入適量預先配制好的凍存液,輕輕吹打使細胞均勻并計數。用凍存液調節(jié)的細胞密度,使之終密度為5×106/ml~1×107/ml。

4、用移液槍按照預計容量,分裝入細胞凍存管[NEST]中,采用自動旋蓋機[NEST]旋蓋密封。

5、標準的凍存程序為降溫速率況處-1℃~-2℃/ min,可將待凍存細胞按照以下步驟逐步凍存:室溫→4℃(20min)→-20℃(30min)→-80℃(過夜)→液氮長期保存。

也可將待凍存放入程序降溫盒[NEST],直接-80℃過夜,再轉移至液氮保存。


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