細(xì)胞質(zhì)分裂是細(xì)胞分裂的最后階段，在此期間，一個細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì)分裂成兩個獨立的細(xì)胞。肌動蛋白絲在支持細(xì)胞結(jié)構(gòu)和促進(jìn)細(xì)胞分裂中起著至關(guān)重要的作用。細(xì)胞分離之前，肌動蛋白絲收縮細(xì)胞膜形成兩個子細(xì)胞^[1]。cytochalasin B是一種廣泛應(yīng)用于細(xì)胞分裂和運(yùn)動研究的化合物，對肌動蛋白絲的結(jié)構(gòu)和動力學(xué)具有重要影響。它主要通過阻斷可收縮微絲的形成來阻礙細(xì)胞分裂，并且cytochalasin B在不同濃度下對細(xì)胞行為的影響不同。高濃度的cytochalasin B誘導(dǎo)細(xì)胞形態(tài)的轉(zhuǎn)變，包括肌動蛋白素的收縮，成纖維細(xì)胞的聚集^[2]。然而，低濃度的細(xì)胞松弛素B抑制了細(xì)胞遷移和膜褶皺，但沒有引起任何明顯的形態(tài)學(xué)改變^[3]。此外，先前的研究表明，cytochalasin B可導(dǎo)致細(xì)胞分裂不完全，從而形成多核細(xì)胞^[4]。
    Celloger^® Pro是一款活細(xì)胞成像設(shè)備，可以根據(jù)用戶設(shè)定的時間參數(shù)對指定的位置進(jìn)行成像記錄。 同時可通過使用分析軟件定量分析圖像的細(xì)胞融合度（%）與熒光強(qiáng)度。因此在本項研究中使用Celloger^® Pro作為成像設(shè)備來研究cytochalasin B對肌動蛋白絲的作用。
 
活細(xì)胞成像應(yīng)用實例：
 
將穩(wěn)定表達(dá)td-Tomato標(biāo)記肌動蛋白的HeLa細(xì)胞以每孔2.5x10⁴個細(xì)胞的密度接種于24孔板中。孵育過夜后，用濃度為1.25 μM(低濃度)和10 μM(高濃度)的cytochalasin B處理細(xì)胞。使用10倍鏡頭的Celloger^® Pro每隔1小時進(jìn)行成像，持續(xù)48小時。最后，除高濃度組外，其余各組細(xì)胞核均用1µM SYTO9 (Invitrogen, S34854)染色。
 
結(jié)果：
在對照組中，細(xì)胞從兩個細(xì)胞分裂為四個子細(xì)胞，進(jìn)行正常的細(xì)胞分裂。相反，用低濃度（1.25μM）的cytochalasin B處理的細(xì)胞不能完成細(xì)胞膜分離，導(dǎo)致單個細(xì)胞內(nèi)形成多個細(xì)胞核。然而，高濃度（10μM）cytochalasin B處理的細(xì)胞表現(xiàn)出肌動蛋白絲結(jié)構(gòu)的嚴(yán)重破壞，導(dǎo)致不可逆的細(xì)胞圓縮(圖1)。定量分析發(fā)現(xiàn)，與對照組相比，低濃度cytochalasin B處理組的多核細(xì)胞比例更高(圖2)。
 
對照組(n=564)和cytochalasin B低濃度處理組(n=493)隨機(jī)取9個點，分別計數(shù)總細(xì)胞數(shù)和兩個或兩個以上細(xì)胞核的細(xì)胞數(shù)。以多核細(xì)胞/總細(xì)胞數(shù)計算多核細(xì)胞的比例。* * * P < 0.001。
 

結(jié)論：
    細(xì)胞內(nèi)的肌動蛋白絲不僅在維持細(xì)胞結(jié)構(gòu)中發(fā)揮作用，而且在細(xì)胞的復(fù)制和分裂過程中也起著至關(guān)重要的作用。實時成像對于監(jiān)測各種細(xì)胞運(yùn)動和對諸如cytochalasin B等藥物的反應(yīng)至關(guān)重要。特別是，當(dāng)對細(xì)胞處理不同濃度的藥物時，由于濃度不同，細(xì)胞的反應(yīng)可能不同，而大量獲得每種濃度的圖像是費(fèi)時費(fèi)力的。Celloger^® Pro的多定位功能、用戶友好型的配套軟件，以及三倍率鏡頭的可選性，為高質(zhì)量實驗數(shù)據(jù)的捕獲提供了一種新型的成像方法。
 
參考文獻(xiàn)：
[1] Pier Paolo D’ Avino., et al. “Cytokinesis in Animal Cells” Cold Spring Harbor Perspectives in Biology (2015): 7: a015834 
[2] J. W. SANGER., “The Use of Cytochalasin B to Distinguish Myoblasts from Fibroblasts in Cultures of Developing Chick Striated Muscle” Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America Volume 71 no. 9 September (1974): 3621-3625. 
[3] YAHARA, ICHIRO., et al. “Correlation between Effects of 24 different cytochalasins on cellular structures and cellular events and those on actin in vitro” The journal of cell biology Volume 92 January (1982): 69-78. 
[4] Awtar Krishan., “Fine structure of cytochalasin-induced multinucleated cells” Journal of ultrastructure research Volume 36 July (1971): 191-204.